Oberli, MA y cols. Entrega de ARNm asistida por nanopartículas lipídicas para una potente inmunoterapia contra el cáncer. Nano Lett. 17, 1326 – 1335 (2017).
Kauffman, KJ y cols. Optimización de formulaciones de nanopartículas lipídicas para la administración de ARNm in vivo con diseños de detección factorial fraccional y definitivo. Nano Lett. 15, 7300 – 7306 (2015).
Akinc, A. et al. Una biblioteca combinatoria de materiales similares a lípidos para la administración de terapias de ARNi. Nat. Biotecnología 26, 561 – 569 (2008).
Han, X. y col. Una caja de herramientas de lípidos ionizables para la entrega de ARN. Nat. Comun. 12, 7233 (2021).
Kim, M. y col. Nanopartículas de lípidos ionizables diseñadas para la administración dirigida de terapias de ARN en diferentes tipos de células del hígado. ciencia Adv. 7, eabf4398 (2021).
Álvarez-Benedicto, E. et al. Optimización de la química de los fosfolípidos para mejorar la entrega de ARN mensajero (ARNm) por nanopartículas lipídicas (LNP). Biomater Sci. 10, 549 – 559 (2022).
Kulkarni, JA, Witzigmann, D., Leung, J., Tam, YYC y Cullis, PR Sobre el papel de los lípidos auxiliares en las formulaciones de nanopartículas lipídicas de ARNip. Nanoescale 11, 21733 – 21739 (2019).
Patel, S. et al. Los análogos de colesterol de origen natural en las nanopartículas de lípidos inducen una forma polimórfica y mejoran la entrega intracelular de ARNm. Nat. Comun. 11, 983 (2020).
Bao, Y. et al. Efecto de la PEGilación sobre la biodistribución y el silenciamiento génico de complejos de nanopartículas de ARNip/lípidos. Pharm Res. 30, 342 – 351 (2013).
Ju, Y. et al. Anticuerpos anti-PEG potenciados en humanos por la vacuna de ARNm de nanopartículas lipídicas del SARS-CoV-2. ACS Nano 16, 11769 – 11780 (2022).
Akinc, A. et al. Desarrollo de formulaciones de ARNip lipidoides para administración sistémica al hígado. Mol. El r. 17, 872 – 879 (2009).
Urits, I. et al. Una revisión de patisirán (ONPATTRO®) para el tratamiento de la polineuropatía en personas con amiloidosis hereditaria por transtiretina. Neurol. El r. 9, 301 – 315 (2020).
Centro Nacional de Inmunización y Enfermedades Respiratorias (EE.UU.). División de Enfermedades Virales. Descripción general y seguridad de la vacuna Moderna COVID-19 (también conocida como Spikevax). Centro para el Control y la Prevención de Enfermedades (2022) https://stacks.cdc.gov/view/cdc/115700.
Fabiani, M. y col. Eficacia de la vacuna Comirnaty (BNT162b2, BioNTech/Pfizer) en la prevención de la infección por SARS-CoV-2 entre trabajadores sanitarios, provincia de Treviso, región de Véneto, Italia, del 27 de diciembre de 2020 al 24 de marzo de 2021. Eurovigilancia 26, 2100420 (2021).
Verma, M. y col. El panorama de los medicamentos genómicos basados en nanopartículas lipídicas. Nat. Rev. droga descubrimiento. 22, 349 – 350 (2023).
Centro Nacional de Inmunización y Enfermedades Respiratorias (EE.UU.). División de Enfermedades Virales. Posibles efectos secundarios después de recibir la vacuna COVID-19. Centro para el Control y la Prevención de Enfermedades (2023) https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/vaccines/expect/after.html.
Turvey, SE y Broide, DH Inmunidad innata. J. Clínica de Alergia. Inmunol. 125, S24-S32 (2010).
Nathan, C. Puntos de control de la inflamación. Naturaleza 420, 846 – 852 (2002).
Takeuchi, O. y Akira, S. Receptores de reconocimiento de patrones e inflamación. Celular 140, 805 – 820 (2010).
Newton, K. & Dixit, VM Señalización en inmunidad innata e inflamación. Arb de resorte frío. Perspect. Biol 4, 3 (2012).
Iwasaki, A. & Medzhitov, R. Control de la inmunidad adaptativa por parte del sistema inmunológico innato. Nat. Immunol 16, 343 – 353 (2015).
Chen, L. y col. Respuestas inflamatorias y enfermedades asociadas a la inflamación en los órganos. Oncotarget 9, 7204 – 7218 (2017).
Kang, S., Tanaka, T., Narazaki, M. y Kishimoto, T. Dirigirse a la señalización de interleucina-6 en la clínica. Inmunidad 50, 1007 – 1023 (2019).
Platanias, LC Mecanismos de señalización mediada por interferón tipo I y tipo II. Nat. Rev. Immunol. 5, 375 – 386 (2005).
Castro, F., Cardoso, AP, Gonçalves, RM, Serre, K. & Oliveira, MJ Interferón-gamma en la encrucijada de la vigilancia o evasión inmune de tumores. Frente. Immunol 9, 847 (2018).
Müller, U. et al. Papel funcional de los interferones tipo I y tipo II en la defensa antiviral. Ciencia: 264, 1918 – 1921 (1994).
McNab, F., Mayer-Barber, K., Sher, A., Wack, A. y O'Garra, A. Interferones tipo I en enfermedades infecciosas. Nat. Rev. Immunol. 15, 87 – 103 (2015).
Ivashkiv, LB & Donlin, LT Regulación de las respuestas al interferón tipo I. Nat. Rev. Immunol. 14, 36 – 49 (2014).
Perkins, DJ & Vogel, SN Espacio y tiempo: nuevas consideraciones sobre la relación entre los receptores tipo Toll (TLR) y los interferones tipo I (IFN). Citocina 74, 171 – 174 (2015).
García, M., Meurs, E. y Esteban, M. La proteína quinasa PKR dsRNA: control de virus y células. Biochimie 89, 799 – 811 (2007).
Dempsey, PW, Allison, ME, Akkaraju, S., Goodnow, CC y Fearon, DT C3d del complemento como adyuvante molecular: uniendo la inmunidad innata y adquirida. Ciencia: 271, 348 – 350 (1996).
Kabelitz, D. Expresión y función de receptores tipo Toll en linfocitos T. actual Opinión inmunol. 19, 39 – 45 (2007).
Iwasaki, A. y Medzhitov, R. Control del receptor tipo peaje de las respuestas inmunitarias adaptativas. Nat. Immunol 5, 987 – 995 (2004).
Bettelli, E., Oukka, M. & Kuchroo, VK Células T(H)-17 en el círculo de inmunidad y autoinmunidad. Nat. Immunol 8, 345 – 350 (2007).
LaRosa, DF et al. La expresión de MyD88 en células T es necesaria para la resistencia a Toxoplasma gondii. proc. Academia Nacional. ciencia 105, 3855 – 3860 (2008).
Li, B., Jones, LL & Geiger, TL IL-6 promueve la proliferación y expansión de células T en condiciones inflamatorias en asociación con una expresión de RORγt de bajo nivel. J. Inmunol. 201, 2934 – 2946 (2018).
Korn, T. & Hiltensperger, M. Papel de la IL-6 en el compromiso de los subconjuntos de células T. Citocina 146, 155654 (2021).
Karikó, K., Ni, H., Capodici, J., Lamphier, M. & Weissman, D. El ARNm es un ligando endógeno para el receptor tipo Toll 3. J. Biol.. Chem. 279, 12542 – 12550 (2004).
Kokkinopoulos, I., Jordan, W. y Ritter, M. Patrones de expresión de ARNm del receptor tipo Toll en células dendríticas y monocitos humanos. Mol. Immunol 42, 957 – 968 (2005).
Karikó, K., Buckstein, M., Ni, H. & Weissman, D. Supresión del reconocimiento del ARN por receptores tipo Toll: el impacto de la modificación de nucleósidos y el origen evolutivo del ARN. Inmunidad 23, 165 – 175 (2005).
Karikó, K. et al. La incorporación de pseudouridina al ARNm produce un vector no inmunogénico superior con mayor capacidad de traducción y estabilidad biológica. Mol. El r. 16, 1833 – 1840 (2008).
Tahtinen, S. y col. IL-1 e IL-1ra son reguladores clave de la respuesta inflamatoria a las vacunas de ARN. Nat. Immunol 23, 532 – 542 (2022).
Li, C. y col. Mecanismos de inmunidad innata y adaptativa a la vacuna Pfizer-BioNTech BNT162b2. Nat. Immunol 23, 543 – 555 (2022).
Alameh, M.-G. et al. Las nanopartículas de lípidos mejoran la eficacia de las vacunas de subunidades de proteína y ARNm al inducir respuestas humorales y de células T auxiliares foliculares robustas. Inmunidad 54, 2877–2892.e2877 (2021).
Kranz, LM y col. El suministro de ARN sistémico a las células dendríticas aprovecha la defensa antiviral para la inmunoterapia del cáncer. Naturaleza 534, 396 – 401 (2016).
Risma, KA et al. Posibles mecanismos de anafilaxia de las vacunas de ARNm de COVID-19. J. Clínica de Alergia. Inmunol. 147, 2075–2082.e2072 (2021).
Verma, AK, Lavine, KJ y Lin, C.-Y. Miocarditis tras la vacunación con ARNm de Covid-19. N. Engl. J. Med. 385, 1332 – 1334 (2021).
Parums, DV Editorial: Vacunas de ARNm del SARS-CoV-2 y el posible mecanismo de trombocitopenia trombótica inmunitaria inducida por vacunas (VITT). Medicina. Sci. Monit. 27, e932899 (2021).
Nishimura, N. y col. Vasculitis por IgA tras la vacunación COVID-19. Modificación. Reumatol. Representante del caso. 7, 122 – 126 (2023).
Flemming, A. La vacuna de ARNm es prometedora en la autoinmunidad. Nat. Rev. Immunol. 21, 72 – 72 (2021).
Chen, Y. et al. Fenómenos autoinmunes de nueva aparición tras la vacunación contra la COVID-19. Inmunología 165, 386 – 401 (2022).
Laisuan, W. Anafilaxia por vacuna COVID-19: evidencia actual y enfoques futuros. Frente. Alergia 2, 801322 (2021).
Hung, SI, Preclaro, IAC, Chung, WH & Wang, CW Reacciones de hipersensibilidad inmediata inducidas por las vacunas COVID-19: tendencias actuales, mecanismos potenciales y estrategias de prevención. Biomedicinas 10, 1260 (2022).
Nilsson, L., Csuth, Á., Storsaeter, J., Garvey, LH y Jenmalm, MC Alergia a las vacunas: evidencia a considerar para las vacunas COVID-19. actual. Opinión. Clínica de Alergia. Inmunol. 21, 401 – 409 (2021).
Klimek, L. y col. Componentes alergénicos de la vacuna mRNA-1273 para COVID-19: posible implicación del polietilenglicol y la activación del complemento mediada por IgG. Alergia 76, 3307 – 3313 (2021).
Sellaturay, P., Nasser, S., Islam, S., Gurugama, P. & Ewan, PW El polietilenglicol (PEG) es una causa de anafilaxia para la vacuna de ARNm COVID-19 de Pfizer/BioNTech. clin. Exp. Alergia 51, 861 – 863 (2021).
Gill, KK, Kaddoumi, A. & Nazzal, S. Micelas lipídicas de PEG como portadores de fármacos: atributos fisicoquímicos, principios de formulación e implicaciones biológicas. J. Objetivo de drogas. 23, 222 – 231 (2015).
D'souza, AA & Shegokar, R. Polietilenglicol (PEG): un polímero versátil para aplicaciones farmacéuticas. Opinión de expertos. Drug Deliv. 13, 1257 – 1275 (2016).
Ibrahim, M. y otros. Polietilenglicol (PEG): naturaleza, inmunogenicidad y papel en la hipersensibilidad de los productos PEGilados. J. Control de liberación 351, 215 – 230 (2022).
Mohamed, M. et al. Liposomas pegilados: respuestas inmunológicas. ciencia Tecnología Adv. Mate. 20, 710 – 724 (2019).
Yang, Q. y col. Análisis de anticuerpos IgG e IgM preexistentes contra polietilenglicol (PEG) en la población general. Anal. Chem 88, 11804 – 11812 (2016).
Szebeni, J. Pseudoalergia relacionada con la activación del complemento: una reacción de estrés en la sangre provocada por nanomedicinas y productos biológicos. Mol. Immunol 61, 163 – 173 (2014).
Koide, H. y col. La respuesta de las células B independientes de las células T es responsable del fenómeno ABC inducido por la inyección repetida de liposomas PEGilados. En t. J. Pharm. 392, 218 – 223 (2010).
Ishida, T., Wang, X., Shimizu, T., Nawata, K. y Kiwada, H. Los liposomas PEGilados provocan una respuesta anti-PEG IgM de manera independiente de las células T. J. Control. Lanzamiento 122, 349 – 355 (2007).
Szebeni, J. y col. Anafilaxis cardíaca relacionada con la activación del complemento en cerdos: papel de la anafilatoxina C5a y la adenosina en anomalías inducidas por liposomas en el ECG y la función cardíaca. Am. J. Physiol.Corazón Circ. Physiol. 290, H1050–H1058 (2006).
Guimarães, LE, Baker, B., Perricone, C. & Shoenfeld, Y. Vacunas, adyuvantes y autoinmunidad. Pharm Res. 100, 190 – 209 (2015).
Toussirot, É. & Bereau, M. Vacunación e inducción de enfermedades autoinmunes. Inflamación. Objetivos de medicamentos para las alergias 14, 94 – 98 (2015).
Wraith, DC, Goldman, M. & Lambert, PH Vacunación y enfermedades autoinmunes: cuál es la evidencia. un artículo del XNUMX de Lancet, 362, 1659 – 1666 (2003).
Banchereau, J. & Pascual, V. Interferón tipo I en el lupus eritematoso sistémico y otras enfermedades autoinmunes. Inmunidad 25, 383 – 392 (2006).
Barrat, FJ y cols. Los ácidos nucleicos de origen mamífero pueden actuar como ligandos endógenos para los receptores tipo Toll y pueden promover el lupus eritematoso sistémico. J. Exp. Med. 202, 1131 – 1139 (2005).
Lövgren, T., Eloranta, ML, Båve, U., Alm, GV y Rönnblom, L. Inducción de la producción de interferón alfa en células dendríticas plasmocitoides mediante complejos inmunes que contienen ácido nucleico liberado por células necróticas o apoptóticas tardías e IgG de lupus. Artritis Rheum. 50, 1861 – 1872 (2004).
Marshak-Rothstein, A. Receptores tipo Toll en enfermedades autoinmunes sistémicas. Nat. Rev. Immunol. 6, 823 – 835 (2006).
Lau, CM y cols. Los autoantígenos asociados a ARN activan las células B mediante la combinación del receptor de antígeno de células B/receptor tipo Toll 7. J. Exp. Med. 202, 1171 – 1177 (2005).
Crow, MK, Olferiev, M. y Kirou, KA Interferones tipo I en enfermedades autoinmunes. año Reverendo Pathol. 14, 369 – 393 (2019).
Chen, S. y col. Influencia del tamaño de partícula en la potencia in vivo de formulaciones de nanopartículas lipídicas de ARNip. J. Control. Lanzamiento 235, 236 – 244 (2016).
Kimura, N. y col. Desarrollo del dispositivo iLiNP: ajuste del tamaño de las nanopartículas lipídicas dentro de los 10 nm para la administración de fármacos. ACS Omega 3, 5044 – 5051 (2018).
Hasset, KJ et al. Impacto del tamaño de las nanopartículas de lípidos en la inmunogenicidad de la vacuna de ARNm. J. Control. Lanzamiento 335, 237 – 246 (2021).
Cheng, Q. et al. Nanopartículas dirigidas selectivamente a órganos (SORT) para la entrega de ARNm específico de tejido y la edición de genes CRISPR-Cas. Nat. Nanotecnol 15, 313 – 320 (2020).
LoPresti, ST, Arral, ML, Chaudhary, N. y Whitehead, KA La sustitución de lípidos auxiliares con alternativas cargadas en nanopartículas lipídicas facilita la entrega dirigida de ARNm al bazo y los pulmones. J. Control. Lanzamiento 345, 819 – 831 (2022).
Bevers, S. y col. Las vacunas de ARNm-LNP adaptadas para la inmunización sistémica inducen una fuerte inmunidad antitumoral al involucrar a las células inmunes esplénicas. Mol. El r. 30, 3078 – 3094 (2022).
Suzuki, T. y col. Aclaramiento sanguíneo dependiente de la tasa de eliminación de PEG de nanopartículas de lípidos PEGilados en ratones: la eliminación más rápida de PEG atenúa la producción de IgM anti-PEG. En t. J. Pharm. 588, 119792 (2020).
Nakamura, T. y col. El efecto del tamaño y la carga de nanopartículas lipídicas preparadas mediante mezcla de microfluidos sobre la transitividad y distribución de los ganglios linfáticos. Mol. Pharm 17, 944 – 953 (2020).
Thomas, SN, Rohner, NA y Edwards, EE Implicaciones del transporte linfático a los ganglios linfáticos en la inmunidad y la inmunoterapia. Annu. Rev. Biomed. Ing. 18, 207 – 233 (2016).
Vangasseri, DP et al. Inmunoestimulación de células dendríticas mediante liposomas catiónicos. Mol. Miembro Biol. 23, 385 – 395 (2006).
Nakanishi, T. y col. Los liposomas cargados positivamente funcionan como un inmunoadyuvante eficaz para inducir respuestas inmunes a proteínas solubles. Biochem. Biophys. Res.. Commun. 240, 793 – 797 (1997).
Nakanishi, T. y col. Los liposomas cargados positivamente funcionan como un inmunoadyuvante eficaz para inducir una respuesta inmune mediada por células a proteínas solubles. J. Control. Lanzamiento 61, 233 – 240 (1999).
Hilgers, LA & Snippe, H. DDA como adyuvante inmunológico. Res. inmunol. 143, 494 – 503 (1992).
Hwang, TL, Aljuffali, IA, Lin, CF, Chang, YT y Fang, JY Los aditivos catiónicos en nanosistemas activan la citotoxicidad y la respuesta inflamatoria de los neutrófilos humanos: nanopartículas lipídicas versus nanopartículas poliméricas. En t. J. Nanomed. 10, 371 – 385 (2015).
Lappalainen, K., Jääskeläinen, I., Syrjänen, K., Urtti, A. y Syrjänen, S. Comparación de ensayos de toxicidad y proliferación celular utilizando dos liposomas catiónicos. Pharm Res. 11, 1127 – 1131 (1994).
Wan, C., Allen, TM y Cullis, PR Sistemas de administración de nanopartículas lipídicas para terapias basadas en ARNip. Entrega de drogas Traducir Res. 4, 74 – 83 (2014).
Simple, SC y col. Encapsulación eficiente de oligonucleótidos antisentido en vesículas lipídicas utilizando aminolípidos ionizables: formación de nuevas estructuras de vesículas multilaminares pequeñas. Biochim Biophys Acta 1510, 152 – 166 (2001).
Wilson, SC y cols. Medición en tiempo real de la eliminación de PEG de nanopartículas lipídicas en suero mediante espectroscopia de RMN. Mol. Pharm 12, 386 – 392 (2015).
Miteva, M. y col. Ajuste de la PEGilación de micelas mixtas para superar las barreras de entrega de ARNip intracelulares y sistémicas. Biomateriales 38, 97 – 107 (2015).
Mehvar, R. Modulación de la farmacocinética y farmacodinamia de proteínas mediante conjugación de polietilenglicol. J. Farmacéutica. Farmacéutica. Ciencia. 3, 125 – 136 (2000).
Jiao, J. y col. La contribución de los pesos moleculares de PEG en emulsiones PEGiladas a las diversas fases del fenómeno de aclaramiento sanguíneo acelerado (ABC) en ratas. AAPS PharmSciTech. 21, 300 (2020).
Xu, H., Wang, KQ, Deng, YH y Chen, DW Efectos de los derivados de colesterol PEG escindibles sobre la eliminación sanguínea acelerada de los liposomas PEGilados. Biomateriales 31, 4757 – 4763 (2010).
Hijo, K. et al. Evasión del fenómeno de aclaramiento sanguíneo acelerado mediante el recubrimiento de liposomas con polisarcosina. J. Control. Lanzamiento 322, 209 – 216 (2020).
Hu, Y., Hou, Y., Wang, H. & Lu, H. Polisarcosina como alternativa al PEG para la conjugación de proteínas terapéuticas. Bioconjug. Chem 29, 2232 – 2238 (2018).
Miao, L., Zhang, Y. y Huang, L. Vacuna de ARNm para inmunoterapia contra el cáncer. mol. Cáncer 20, 41 (2021).
Guevara, ML, Persano, F. & Persano, S. Avances en nanopartículas lipídicas para la inmunoterapia contra el cáncer basada en ARNm. Frente. química 8, 589959 (2020).
Shimosakai, R., Khalil, IA, Kimura, S. y Harashima, H. Nanopartículas lipídicas cargadas con ARNm que se dirigen a las células inmunitarias del bazo para su uso como vacunas contra el cáncer. Farmacéuticos 15, 1017 (2022).
AWATE, S., Babiuk, L. & Mutwiri, G. Mecanismos de acción de los adyuvantes. Frente. Immunol 4, 114 (2013).
Brito, LA, Malyala, P. & O'Hagan, DT Formulaciones de adyuvantes de vacunas: una perspectiva farmacéutica. Semin. Immunol 25, 130 – 145 (2013).
Tom, JK y cols. Aplicaciones de sinergias inmunes inmunomoduladoras al descubrimiento de adyuvantes y al desarrollo de vacunas. Tendencias Biotecnología. 37, 373 – 388 (2019).
Lee, K. y col. Nanopartículas lipídicas incorporadas como adyuvante para mejorar la inmunoterapia contra el cáncer mediada por ARNm. Biomater Sci. 8, 1101 – 1105 (2020).
Luan, N., Cao, H., Wang, Y., Lin, K. y Liu, C. Las nanopartículas de lípidos ionizables mejoraron el efecto adyuvante sinérgico de CpG ODN y QS21 en una vacuna de la subunidad de glicoproteína E del virus varicela zoster. Farmacia 14, 973 (2022).
Zhu, D. & Tuo, W. QS-21: un potente adyuvante de vacuna. Nat. Pinchar. Química. Res. 3, e113 (2016).
Miao, L. et al. La administración de vacunas de ARNm con lípidos heterocíclicos aumenta la eficacia antitumoral mediante la activación de células inmunitarias mediada por STING. Nat. Biotecnología 37, 1174 – 1185 (2019).
Buschmann, MD y cols. Sistemas de administración de nanomateriales para vacunas de ARNm. Vacunas 9, 65 (2021).
Zhang, Y. et al. La vacuna LNP-mRNA derivada del agonista de STING mejora la inmunidad protectora contra el SARS-CoV-2. Nano Lett. 23, 2593 – 2600 (2023).
Ripoll, M. et al. Un lípido modificado con imidazol confiere una mayor estabilidad del ARNm-LNP y fuertes propiedades de inmunización en ratones y primates no humanos. Biomateriales 286, 121570 (2022).
Ruiz, María Esperanza y Sebastián Scioli Montoto. et al. Vías de administración de medicamentos. Procesos ADME en ciencias farmacéuticas: dosificación, diseño y éxito de la farmacoterapia, 97 – 133 (2018).
Francia, V., Schiffelers, RM, Cullis, PR y Witzigmann, D. La corona biomolecular de nanopartículas lipídicas para terapia génica. Bioconjug. Chem 31, 2046 – 2059 (2020).
Van der Jeught, K. et al. Las células dendríticas que se dirigen a los lipopoliplexes de ARNm combinan una fuerte inmunidad de células T antitumorales con una seguridad inflamatoria mejorada. ACS Nano 12, 9815 – 9829 (2018).
Anderluzzi, G. et al. El papel del formato de nanopartículas y la vía de administración en la potencia de la vacuna de ARNm autoamplificadora. J. Control. Lanzamiento 342, 388 – 399 (2022).
Schnyder, JL y cols. Comparación de dosis equivalentes de vacunas fraccionadas administradas por vía intradérmica e intramuscular o subcutánea: una revisión sistemática. Medicina de viaje. Infectar. Dis. 41, 102007 (2021).
Van Hoecke, L. y col. El efecto opuesto del IFN tipo I sobre la respuesta de las células T por las vacunas lipoplex de ARNm no modificado está determinado por la vía de administración. Mol. El r. Ácidos nucleicos 22, 373 – 381 (2020).
Dilliard, SA, Cheng, Q. y Siegwart, DJ Sobre el mecanismo de administración de ARNm específico de tejido mediante nanopartículas selectivas dirigidas a órganos. proc. Academia Nacional. ciencia 118, e2109256118 (2021).
Zuckerman, JN La importancia de inyectar vacunas en el músculo. Diferentes pacientes necesitan diferentes tamaños de agujas. BMJ 321, 1237 – 1238 (2000).
Intapiboon, P. et al. Inmunogenicidad y seguridad de un refuerzo intradérmico de la vacuna de ARNm BNT162b2 después de dos dosis de la vacuna inactivada contra el SARS-CoV-2 en población sana. Vacunas 9, 1375 (2021).
Hunter, J. Técnicas de inyección intramuscular. Enfermeras. Pararse. 22, 35 (2008).
Leveque, D. Administración subcutánea de agentes anticancerígenos. Anticancer Res. 34, 1579 – 1586 (2014).
Oussoren, C. & Storm, G. Liposomas dirigidos a los linfáticos mediante administración subcutánea. Adv. Drug Deliv. Rdo. 50, 143 – 156 (2001).
Romani, N. y col. Dirigirse a las células dendríticas de la piel para mejorar la vacunación intradérmica. Curr. Parte superior. Microbiol. Immunol. 351, 113 – 138 (2012).
Kis, EE, Winter, G. & Myschik, J. Dispositivos para vacunación intradérmica. Vacune 30, 523 – 538 (2012).
Kim, Y.-C., Jarrahian, C., Zehrung, D., Mitragotri, S. y Prausnitz, MR Sistemas de administración para vacunación intradérmica. Inmunización intradérmica. 351, 77 – 112 (2012).
Fabrizi, F., Dixit, V., Magnini, M., Elli, A. y Martin, P. Metanálisis: vacunación intradérmica versus intramuscular contra el virus de la hepatitis B en pacientes con enfermedad renal crónica. Farmacia de alimentos. El r. 24, 497 – 506 (2006).
Schnyder, JL y cols. Dosis fraccionada de vacunación intradérmica en comparación con la vacunación intramuscular y subcutánea: una revisión sistemática y un metanálisis. Medicina de viaje. Infectar. Dis. 37, 101868 (2020).
Jung, GS y Kim, HS Una técnica novedosa para reducir el dolor provocado por la inyección intradérmica de toxina botulínica tipo A. Plast. Reconstr. Cirugía. Globo. Abierto 9, e3417 (2021).
Ipp, MM y col. Reacciones adversas a la vacunación contra difteria, tétanos, tos ferina y polio a los 18 meses de edad: efecto del lugar de inyección y longitud de la aguja. Pediatría 83, 679 – 682 (1989).
Gallorini, S., O'Hagan, DT y Baudner, BC En Administración mucosa de productos biofarmacéuticos: biología, Desafíos y estrategias (eds José das Neves y Bruno Sarmento) 3–33 (Springer, 2014).
Tang, DC y Nguyen, HH Los brazos Yin-Yang de las vacunas: poder para combatir enfermedades versus inflamación que destruye los tejidos. Experto Rev. Vacunas 13, 417 – 427 (2014).
Broos, K. y col. La administración intravenosa de ARNm de antígeno mediada por partículas produce fuertes respuestas de células T específicas de antígeno a pesar de la inducción de interferón tipo I. Mol. El r. Ácidos nucleicos 5, e326 (2016).
Mao, T. y otros. La vacuna de pico intranasal sin adyuvante provoca inmunidad protectora de la mucosa contra los sarbecovirus. Ciencia: 378, eabo2523 (2022).
Medzhitov, R. & Janeway, C. Jr. Reconocimiento inmunológico innato: mecanismos y vías. Immunol. Rvdo. 173, 89 – 97 (2000).
O'Neill, LAJ, Golenbock, D. & Bowie, AG La historia de los receptores tipo Toll: redefiniendo la inmunidad innata. Nat. Rev. Immunol. 13, 453 – 460 (2013).
Kopp, EB & Medzhitov, R. La familia de receptores Toll y el control de la inmunidad innata. actual Opinión inmunol. 11, 13 – 18 (1999).
Clemente, M. et al. IFITM3 restringe la producción de citoquinas inflamatorias inducida por virus al limitar las respuestas de TLR mediadas por Nogo-B. Nat. Comun. 13, 5294 (2022).
Xu, S. y col. Las moléculas constitutivas del MHC de clase I regulan negativamente las respuestas inflamatorias desencadenadas por TLR a través de la vía Fps-SHP-2. Nat. Immunol 13, 551 – 559 (2012).
Zheng, D. y col. El inflamasoma epitelial Nlrp10 media la protección contra la autoinflamación intestinal. Nat. Immunol 24, 585 – 594 (2023).
Kagan, JC El exceso de lípidos en los endosomas dicta la localización de NLRP3 y la activación del inflamasoma. Nat. Immunol 24, 3 – 4 (2023).
Karmacharya, P., Patil, BR y Kim, JO Avances recientes en nanopartículas de lípidos y ARNm como opción de tratamiento para la inmunoterapia del cáncer. J. Farmacéutica. Investigando. 52, 415 – 426 (2022).
- Distribución de relaciones públicas y contenido potenciado por SEO. Consiga amplificado hoy.
- PlatoData.Network Vertical Generativo Ai. Empodérate. Accede Aquí.
- PlatoAiStream. Inteligencia Web3. Conocimiento amplificado. Accede Aquí.
- PlatoESG. Carbón, tecnología limpia, Energía, Ambiente, Solar, Gestión de residuos. Accede Aquí.
- PlatoSalud. Inteligencia en Biotecnología y Ensayos Clínicos. Accede Aquí.
- Fuente: https://www.nature.com/articles/s12276-023-01086-x
