Alberro, A., Iparraguirre, L., Fernandes, A. & Otaegui, D. Vesículas extracelulares en sangre: fuentes, efectos y aplicaciones. En t. J. Mol. Sci. 22, 8163 (2021).
Witwer, K. W. & Wolfram, J. Vesículas extracelulares versus nanopartículas sintéticas para la administración de fármacos. Nat. Rev.Mater. 6, 103 – 106 (2021).
Busatto, S., Pham, A., Suh, A., Shapiro, S. y Wolfram, J. Administración de fármacos organotrópicos: nanopartículas sintéticas y vesículas extracelulares. Biomédica. Microdispositivos 21, 46 (2019).
Beetler, DJ y col. Vesículas extracelulares como medicina personalizada. mol. Aspectos Med. 91, 101155 (2022).
Walker, S. y col. Sistemas de administración de fármacos basados en vesículas extracelulares para el tratamiento del cáncer. Teranósticos 9, 8001 – 8017 (2019).
Hu, T., Wolfram, J. & Srivastava, S. Vesículas extracelulares en la detección del cáncer: esperanzas y exageraciones. Tendencias del cáncer 7, 122 – 133 (2020).
Iannotta, D., Yang, M., Celia, C., Di Marzio, L. y Wolfram, J. Terapéutica de vesículas extracelulares a partir de plasma y tejido adiposo. Nano hoy 39, 101159 (2021).
Ghodasara, A., Raza, A., Wolfram, J., Salomon, C. y Popat, A. Traducción clínica de vesículas extracelulares. Adv. Saludc. Mater. https://doi.org/10.1002/adhm.202301010 (2023).
Dumas, SJ et al. Diversidad fenotípica y especialización metabólica de las células endoteliales renales. Nat. Rev. Nefrol. 17, 441 – 464 (2021).
Jourde-Chiche, N. et al. Estructura y función del endotelio en la salud y enfermedad renal. Nat. Rev. Nefrol. 15, 87 – 108 (2019).
Wolfram, J. & Ferrari, M. Nanomedicina clínica contra el cáncer. Nano hoy 25, 85 – 89 (2019).
Prabhakar, U. et al. Desafíos y consideraciones clave del efecto mejorado de permeabilidad y retención para la administración de fármacos nanomedicinales en oncología. Cáncer Res. 73, 2412 – 2417 (2013).
Sindhwani, S. et al. La entrada de nanopartículas en tumores sólidos. Nat. Mate. 19, 566 – 575 (2020).
Lessey-Morillon, EC et al. El factor de intercambio de nucleótidos de guanina RhoA, LARG, media la mecanotransducción dependiente de ICAM-1 en células endoteliales para estimular la migración transendotelial. J. Inmunol. 192, 3390 – 3398 (2014).
Zeng, Z. y col. El miR-25-3p exosomal derivado del cáncer promueve la formación de nichos premetastásicos al inducir permeabilidad vascular y angiogénesis. Nat. Comun. 9, 5395 (2018).
Treps, L., Perret, R., Edmond, S., Ricard, D. y Gavard, J. Las células madre similares al glioblastoma secretan el factor proangiogénico VEGF-A en vesículas extracelulares. J. Extracell. vesículas 6, 1359479 (2017).
Tominaga, N. et al. Las células cancerosas metastásicas del cerebro liberan vesículas extracelulares que contienen microARN-181c capaces de destruir la barrera hematoencefálica. Nat. Comun. 6, 6716 (2015).
De La Cruz, E. M. Cómo la cofilina corta un filamento de actina. Biophys. Rvdo. 1, 51 – 59 (2009).
Chatterjee, V. y col. Las microvesículas endoteliales que transportan carga rica en Src alteran la integridad de la unión adherente y la homeostasis del citoesqueleto. Cardiovascular. Res. 116, 1525 – 1538 (2020).
Sperandio, M., Gleissner, C. A. & Ley, K. Glicosilación en el tráfico de células inmunitarias. Immunol. Rvdo. 230, 97 – 113 (2009).
Goncalves, J. P., Deliwala, V. J., Kolarich, D., Souza-Fonseca-Guimaraes, F. y Wolfram, J. El glicocódigo de vesículas extracelulares derivado de células cancerosas en inmunoevasión. Tendencias Immunol. 43, 864 – 867 (2022).
Yang, M. y col. Características del transportador de glucosa-1 de la vesícula extracelular y de los glucanos en las interacciones inflamatorias monocitos-endoteliales. Nanomedicina 42, 102515 (2022).
Walker, SA et al. Análisis de nodos de glicano de vesículas extracelulares derivadas de plasma. Células 9, 1946 (2020).
Williams, C. y col. Glicosilación de vesículas extracelulares: conocimientos actuales, herramientas y perspectivas clínicas. J. Extracell. vesículas 7, 1442985 (2018).
Pendiuk Gonçalves, J. et al. El análisis de los ganglios de glucanos detecta niveles variables de glucosaminoglucanos en vesículas extracelulares derivadas de melanoma. En t. J. Mol. Sci. 9, 1946 (2023).
Li, Y. et al. Origen EV: enumeración del origen tejido-celular de las vesículas extracelulares circulantes utilizando el perfil exLR. Estructura informática. Biotecnología. J. 18, 2851 – 2859 (2020).
Baluk, P. y col. Uniones funcionalmente especializadas entre células endoteliales de vasos linfáticos. J. Exp. Med. 204, 2349 – 2362 (2007).
Trzewik, J., Mallipattu, S. K., Artmann, G. M., Delano, F. A. y Schmid-Schönbein, G. W. Evidencia de un segundo sistema valvular en los linfáticos: microválvulas endoteliales. FASEB J. 15, 1711 – 1717 (2001).
Breslin, JW et al. Estructura y fisiología de la red de vasos linfáticos. compr. Fisiol. 9, 207 – 299 (2018).
Liu, D. y col. La promoción de CD97 de la metástasis linfática del carcinoma gástrico depende del exosoma. Cáncer gástrico 19, 754 – 766 (2016).
Shimizu, A. y col. El CD47 exosomal juega un papel esencial en la evasión inmune en el cáncer de ovario. mol. Cáncer Res. 19, 1583 – 1595 (2021).
Tessandier, N. y col. Las plaquetas diseminan vesículas extracelulares en la linfa en la artritis reumatoide. Arteriosclera. trombo. vasco Biol. 40, 929 – 942 (2020).
Welsh, J. D., Kahn, M. L. & Sweet, D. T. Hemostasia linfovenosa y el papel de las plaquetas en la regulación del flujo linfático y la maduración de los vasos linfáticos. Sangre 128, 1169 – 1173 (2016).
Mehta, D. y Malik, A. B. Mecanismos de señalización que regulan la permeabilidad endotelial. Fisiol. Rdo. 86, 279 – 367 (2006).
Fernández-Hernando, C. et al. Evidencia genética que respalda un papel fundamental de la caveolina-1 endotelial durante la progresión de la aterosclerosis. Metab Célula. 10, 48 – 54 (2009).
Morad, G. et al. Las vesículas extracelulares derivadas de tumores rompen la barrera hematoencefálica intacta mediante transcitosis. ACS Nano 13, 13853 – 13865 (2019).
Chen, CC y col. Aclaración de la migración de exosomas a través del modelo de barrera hematoencefálica in vitro. Celúla. Mol. Bioeng. 9, 509 – 529 (2016).
Gonda, A., Kabagwira, J., Senthil, G. N. & Wall, N. R. Internalización de exosomas mediante endocitosis mediada por receptores. mol. Cáncer Res. 17, 337 – 347 (2019).
Mulcahy, L. A., Pink, R. C. & Carter, D. R. F. Rutas y mecanismos de captación de vesículas extracelulares. J. Extracell. vesículas 3, 24641 (2014).
Feng, Y. et al. El bloqueo de las interacciones mediadas por integrinas con las células endoteliales maternas revirtió la disfunción de las células endoteliales inducida por los vehículos eléctricos, derivados de la placenta preeclámptica. En t. J. Mol. Sci. 23, 13115 (2022).
Fomina, A. F., Deerinck, T. J., Ellisman, M. H. & Cahalan, M. D. La regulación del tráfico de membranas y la organización subcelular de los compartimentos endocíticos se revela con FM1-43 en células T humanas activadas y en reposo. Exp. Celúla. Res. 291, 150 – 166 (2003).
Morelli, AE et al. Endocitosis, clasificación intracelular y procesamiento de exosomas por células dendríticas. Sangre 104, 3257 – 3266 (2004).
Wei, X. y col. La fosfatidilserina de superficie es responsable de la internalización de microvesículas derivadas de células madre mesenquimales de médula ósea humana inducidas por hipoxia en células endoteliales humanas. PLoS ONE 11, e0147360 (2016).
He, C., Hu, Y., Yin, L., Tang, C. y Yin, C. Efectos del tamaño de las partículas y la carga superficial sobre la absorción celular y la biodistribución de nanopartículas poliméricas. Biomateriales 31, 3657 – 3666 (2010).
Lu, F., Wu, S. H., Hung, Y. & Mou, C. Y. Efecto del tamaño en la absorción celular en nanopartículas de sílice mesoporosas uniformes y bien suspendidas. Pequeño 5, 1408 – 1413 (2009).
Théry, C. et al. Información mínima para estudios de vesículas extracelulares 2018 (MISEV2018): declaración de posición de la Sociedad Internacional de Vesículas Extracelulares y actualización de las directrices MISEV2014. J. Extracell. vesículas 7, 1535750 (2018).
Gould, S. J. & Raposo, G. Mientras esperamos: hacer frente a una nomenclatura imperfecta para vesículas extracelulares. J. Extracell. vesículas 2, 20389 (2013).
Sousa de Almeida, M. et al. Comprender la endocitosis de nanopartículas para mejorar las estrategias de orientación en nanomedicina. Chem Soc. Rdo. 50, 5397 – 5434 (2021).
Nazarenko, I. et al. La tetraspanina Tspan8 de la superficie celular contribuye a las vías moleculares de activación de células endoteliales inducida por exosomas. Cáncer Res. 70, 1668 – 1678 (2010).
Yuan, D. y col. Exosomas de macrófagos como nanoportadores naturales para el suministro de proteínas al cerebro inflamado. Biomateriales 142, 1 – 12 (2017).
Joshi, B. S. & Zuhorn, I. S. Transporte dependiente de dinamina mediado por proteoglicanos de heparán sulfato de exosomas de células madre neurales en un modelo de barrera hematoencefálica in vitro. EUR. J. Neurosci. 53, 706 – 719 (2021).
Ihrcke, N. S., Wrenshall, L. E., Lindman, B. J. & Platt, J. L. Papel del sulfato de heparán en las interacciones entre el sistema inmunológico y los vasos sanguíneos. inmunol. Hoy 14, 500 – 505 (1993).
Chanda, D. y col. La fibronectina en la superficie de las vesículas extracelulares media la invasión de fibroblastos. Soy. J. Respir. Mol celular. Biol. 60, 279 – 288 (2019).
Purushothaman, A. et al. La fibronectina en la superficie de los exosomas derivados de células de mieloma media en las interacciones exosoma-célula. J. Biol.. Chem. 291, 1652 – 1663 (2016).
Deng, Z. y col. La interacción de células tumorales con leucocitos asociados a tumores conduce a la inducción de fibronectina exosomal tumoral y promueve la progresión del tumor. Soy. J. Pathol. 180, 390 – 398 (2012).
Mertens, G., Cassiman, J. J., Van den Berghe, H., Vermylen, J. y David, G. Proteoglucanos de heparán sulfato de superficie celular de células endoteliales vasculares humanas. Caracterización de proteínas centrales y propiedades de unión a antitrombina III. J. Biol.. Chem. 267, 20435 – 20443 (1992).
Matsumoto, J. y col. Transmisión de vesículas extracelulares derivadas de eritrocitos que contienen α-sinucleína a través de la barrera hematoencefálica mediante transcitosis mediada por adsorción: ¿otro mecanismo para el inicio y la progresión de la enfermedad de Parkinson? Acta Neuropathol. Comunitario. 5, 71 (2017).
Banks, W. A. et al. Transporte de vesículas extracelulares a través de la barrera hematoencefálica: farmacocinética cerebral y efectos de la inflamación. En t. J. Mol. Sci. 21, 4407 (2020).
Hervé, F., Ghinea, N. y Scherrmann, J.-M. Entrega al SNC mediante transcitosis adsortiva. AAPS J. 10, 455 – 472 (2008).
Banks, W. A., Kastin, A. J., Brennan, J. M. & Vallance, K. L. La endocitosis adsortiva del VIH-1gp120 por la barrera hematoencefálica se ve reforzada por el lipopolisacárido. Exp. Neurol. 156, 165 – 171 (1999).
Wurdinger, T. y col. Vesículas extracelulares y su convergencia con vías virales. Adv. Virol. 2012, 767694 (2012).
Banks, W. A. et al. Transporte de pseudovirus del virus de la inmunodeficiencia humana tipo 1 a través de la barrera hematoencefálica: papel de las proteínas de la envoltura y endocitosis de adsorción. J.Virol. 75, 4681 – 4691 (2001).
Ben-Zvi, A. et al. Mfsd2a es fundamental para la formación y función de la barrera hematoencefálica. Naturaleza 509, 507 – 511 (2014).
Andreone, B. J. et al. La permeabilidad de la barrera hematoencefálica está regulada por la supresión de la transcitosis mediada por caveolas, dependiente del transporte de lípidos. Neurona 94, 581–594.e5 (2017).
Nguyen, LN et al. Mfsd2a es un transportador del ácido graso docosahexaenoico, ácido graso esencial omega-3. Naturaleza 509, 503 – 506 (2014).
Busatto, S. y col. Administración de fármacos basada en lipoproteínas. Adv. Drug Deliv. Rdo. 159, 377 – 390 (2020).
Simonsen, J. B. ¿Qué estamos mirando? Vesículas extracelulares, lipoproteínas o ambas. Circo. Res. 121, 920 – 922 (2017).
Toth, EA et al. Formación de una corona proteica en la superficie de vesículas extracelulares en el plasma sanguíneo. J. Extracell. vesículas 10, e12140 (2021).
Sodar, BW et al. La lipoproteína de baja densidad imita los exosomas y microvesículas derivados del plasma sanguíneo durante el aislamiento y la detección. Sci. Reps. 6, 24316 (2016).
Busatto, S. y col. Las vesículas extracelulares derivadas de metástasis cerebrales inducen la unión y agregación de lipoproteínas de baja densidad. J. Nanobiotecnología. 18, 162 (2020).
Busatto, S. y col. Consideraciones para las interacciones de vesículas extracelulares y lipoproteínas en ensayos de cultivos celulares. J. Extracell. vesículas 11, e12202 (2022).
Lozano-Andrés, E. et al. Asociación física de partículas de lipoproteínas de baja densidad y vesículas extracelulares revelada mediante análisis de partículas individuales. Preimpresión en https://doi.org/10.1101/2022.08.31.506022 (2022).
Pham, M.-T. et al. Salida endosómica y transmisión intercelular de lipoproteínas hepáticas que contienen ApoE y su explotación por el virus de la hepatitis C. PLoS Pathog. 19, e1011052 (2023).
Amplio, K. et al. Desentrañando vesículas extracelulares multicapa: especulación sobre la causa. J. Extracell. vesículas 12, e12309 (2023).
Phinney, DG y col. Las células madre mesenquimales utilizan vesículas extracelulares para subcontratar la mitofagia y transportar microARN. Nat. Comun. 6, 8472 (2015).
Dixson, A. C., Dawson, T. R., Di Vizio, D. & Weaver, A. M. Regulación específica del contexto de la biogénesis de vesículas extracelulares y la selección de carga. Nat. Rev Mol. Biol celular. 4, 454 – 476 (2023).
Dallas, S. L., Prideaux, M. & Bonewald, L. F. El osteocito: una célula endocrina… y más. Endocr. Rdo. 34, 658 – 690 (2013).
Abbott, N. J., Ronnback, L. y Hansson, E. Interacciones entre astrocitos y endotelio en la barrera hematoencefálica. Nat. Rev. Neurosci. 7, 41 – 53 (2006).
Xie, Y., Bagby, T. R., Cohen, M. S. & Forrest, M. L. Entrega de fármacos al sistema linfático: importancia en futuros diagnósticos y terapias del cáncer. Opinión de expertos. Drug Deliv. 6, 785 – 792 (2009).
Parker, R. J., Hartman, K. D. & Sieber, S. M. Absorción linfática y disposición tisular de liposomas atrapados [14C]adriamicina tras la administración intraperitoneal a ratas. Cáncer Res. 41, 1311 – 1317 (1981).
Fujimoto, Y., Okuhata, Y., Tyngi, S., Namba, Y. y Oku, N. Linfografía por resonancia magnética de ganglios linfáticos profundos con ácido liposomal de gadolinio-dietilentriamina pentaacético. Biol. Pharm. Toro. 23, 97 – 100 (2000).
Kang, M., Jordan, V., Blenkiron, C. y Chamley, L. W. Biodistribución de vesículas extracelulares después de la administración a animales: una revisión sistemática. J. Extracell. vesículas 10, e12085 (2021).
Amruta, A., Iannotta, D., Cheetham, S. W., Lammers, T. y Wolfram, J. Organotropismo vascular en la administración de fármacos. Adv. Drug Deliv. Rdo. 201, 115054 (2023).
Li, C. y col. El papel de los miARN exosomales en el cáncer. J. Transl. Medicina. 20, 6 (2022).
Crowl, J. T., Gray, E. E., Pestal, K., Volkman, H. E. y Stetson, D. B. Detección de ácido nucleico intracelular en autoinmunidad. año Rev. Inmunol. 35, 313 – 336 (2017).
Snaebjornsson, M. T., Janaki-Raman, S. & Schulze, A. Engrasando las ruedas de la máquina del cáncer: el papel del metabolismo de los lípidos en el cáncer. Metab Célula. 31, 62 – 76 (2020).
Lei, K. y col. El endurecimiento de las células cancerosas a través del agotamiento del colesterol mejora la inmunoterapia adoptiva de células T. Nat. Biomed. Ing. 5, 1411 – 1425 (2021).
- Distribución de relaciones públicas y contenido potenciado por SEO. Consiga amplificado hoy.
- PlatoData.Network Vertical Generativo Ai. Empodérate. Accede Aquí.
- PlatoAiStream. Inteligencia Web3. Conocimiento amplificado. Accede Aquí.
- PlatoESG. Carbón, tecnología limpia, Energía, Ambiente, Solar, Gestión de residuos. Accede Aquí.
- PlatoSalud. Inteligencia en Biotecnología y Ensayos Clínicos. Accede Aquí.
- Fuente: https://www.nature.com/articles/s41565-023-01522-z
